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植物α-淀粉酶(α-amylase,α-AL)試劑盒操作說明

2016-3-17  

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植物α-淀粉酶(α-amylase,α-AL)試劑盒說明書
分光光度法 50 管/24 樣
測定意義:
淀粉酶負責水解淀粉,包括α-淀粉酶和β-淀粉酶。α-淀粉酶(EC 3.2.1.1)可隨機地作用于淀粉
中的α-1,4-糖苷鍵,生成葡萄糖、麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原糖,同時使淀粉的粘度降
低,因此又稱為液化酶。
測定原理:
還原糖還原 3,5-二硝基水楊酸生成棕紅色物質(zhì)。β-淀粉酶不耐熱,在 70℃鈍化 15min,從而
測定α-淀粉酶活性。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、恒溫水浴鍋、臺式離心機、可調(diào)式移液器、玻璃比色皿、研缽和蒸餾水。
試劑的組成和配制:
試劑一:25mL×1 瓶,常溫保存,若有黃色晶體析出,需加熱溶解后再用;
試劑二:20mL×1 瓶,4℃保存。
粗酶液提?。?br />稱取 0.1~0.2g 樣本(建議稱取約 0.1g 樣本) ,加 1 mL 蒸餾水勻漿;將勻漿倒入離心管中,
在室溫下放置提取15min,每隔5min 振蕩 1次,使其充分提?。?000g,室溫離心 10min,
吸取上清液并且加蒸餾水定容至 10 mL,搖勻,即為淀粉酶原液。
操作步驟和加樣表(在1.5mLEP 管中依次加入下列試劑) :
1、分光光度計預熱30min 以上,調(diào)節(jié)波長到 540 nm,蒸餾水調(diào)零。
1、β-淀粉酶滅活:
試劑(μL) 對照管 測定管
α-淀粉酶原液 250 250
70℃水浴15min 左右,冷卻
2、加入試劑一并且保溫:
試劑一 500
將以上對照管、測定管和試劑二置于 40℃恒溫水浴中保溫 10min 左右
3、準確反應 5min
試劑二 250 250
在 40℃恒溫水浴中準確保溫 5min
4、加入試劑一,并且混勻
試劑一 500
混勻,室溫靜置 10min,蒸餾水調(diào)零,540nm 處讀取對照管和測定管吸光度,計算ΔA=A
測定管-A對照管。
植物α-淀粉酶(α-amylase,α-AL)試劑盒說明書α-淀粉酶活性計算:
1、標準條件下測定回歸曲線為 y=0.0895x -0.022; x 為標準品濃度(mg/mL) ,y 為吸光值。
2、α-淀粉酶活性
(1)按照樣本質(zhì)量計算
單位定義:每 g 組織每分鐘催化產(chǎn)生 1mg 還原糖定義為 1 個酶活力單位。
α-淀粉酶活性(U/g 鮮重)=[(ΔA+0.022)÷0.0895×V 反總]÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T=89.4×(ΔA+
0.022)÷W
(2)按照蛋白質(zhì)含量計算
單位定義:每 mg 組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生 1mg 還原糖定義為1 個酶活性單位。
α-淀粉酶活性(U/mg prot)= [(ΔA+0.022)÷0.0895×V反總]÷ (V樣×Cpr) ÷T=8.94×(ΔA+0.022)
÷Cpr
V 反總:反應體系總體積,1mL;V 樣:加入反應體系中樣本體積,0.25 mL;V 樣總:提
取液總體積,10 mL; Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g;T:反應時間,
5min。

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